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流式实验必备!常见组织样本单细胞悬液制备方法(下)

发表时间:2025-03-26

众所周知,实验的成功往往依赖于高质量的样本制备,对于流式细胞术而言,制备单细胞悬液是确保实验顺利进行的关键步骤。为了进行有效的流式分析,必须将组织分解成单个细胞,并尽可能保持细胞的基本特性和生物学功能。在前文中,小编已经介绍了一些常见的组织样本单细胞悬液制备方法,本文将进一步深入探讨更多相关的技术和注意事项。

单细胞悬液制备

一、淋巴组织细胞

1.取出淋巴结,并将其浸泡在干净的PBS溶液中。

2.使用2.5 mL无菌注射器吸取培养液,左手用镊子夹住淋巴结,右手持注射器小心插入并吹打,直到淋巴结内的细胞完全释放,只剩下白色的结缔组织和脂肪组织。

3.将释放出的胸腺细胞通过200目筛网过滤,收集到15 mL离心管中,进行300 g离心5分钟,弃去上清液。

4.使用细胞染色缓冲液重悬胸腺细胞,进行计数,并调整细胞浓度至1×10?个/mL。

淋巴组织细胞流式结果

二、肠粘膜

(Ⅰ)动物准备:在开始前确保所有操作都在无菌条件下进行。对小鼠实施安乐死,并用70%乙醇消毒腹部皮肤。

(Ⅱ)取材:打开腹腔,暴露并取出整个小肠。用PBS轻轻冲洗小肠以去除内容物。

(Ⅲ)剪碎组织:将小肠放置于含有PBS的培养皿中,使用无菌剪刀将小肠剪成小段(约1-2mm长)。

(Ⅳ)消化:将剪碎的小肠段转移到含有预热至37°C的酶混合物的离心管中,根据酶的活性调整消化时间,一般为15-30分钟。期间需要每隔几分钟轻轻摇晃一次离心管以促进消化。

(Ⅴ)终止消化:消化完成后,加入适量的含有10% FBS的培养基终止酶的作用,然后通过70μm细胞筛网过滤,收集滤液到新的离心管中。

(Ⅵ)洗涤:以1000 rpm的速度离心5分钟,弃上清,重复此步骤2-3次,直到细胞悬液中没有明显的杂质。

(Ⅶ)重悬细胞:最后,将细胞沉淀重悬于适量的培养基中,可以使用台盼蓝染色法检测细胞活力,并通过细胞计数板计数细胞数量。

肠粘膜单细胞悬液制备

三、肿瘤组织

(1)将取出的肿瘤置于含有无菌PBS的15毫升离心管中,保持在冰上。样本量不宜超过1755mm3/10ml,若需更多细胞,可混合来自同一患者的5-10只小鼠的肿瘤组织。

(2)使用无菌手术刀将肿瘤组织切成小块,加入10ml 1X解离液,充分混匀后,置于37℃、5% CO2的培养箱中孵育15分钟。

(3)使用25ml吸管轻柔地上下抽吸混合物数次,再用10ml血清移液管进一步帮助组织分散,然后重新放入培养箱。

(4)每隔15分钟抽吸一次,持续3小时,直至得到均匀的细胞悬液。注意,组织孵育时间不应超过3小时,以免影响细胞活力。

(5)将70μm滤网置于50ml离心管上,将10ml细胞悬液通过滤网过滤。

(6)用10ml IMDM(含10% FBS)清洗滤网,确保所有细胞都被收集。

(7)收集的细胞悬液以300g离心5分钟。弃上清后,加入1ml预冷的ACK裂解缓冲液,冰上孵育不超过5分钟以裂解红细胞。

(8)加入10ml PBS洗涤,再次以300g离心5分钟。

(9)最后,将细胞重悬于10ml PBS中,并使用台盼蓝染色法计数活细胞。

(10)制得的单细胞悬液可用于小鼠注射或低温保存。

肿瘤组织单细胞悬液制备

流式细胞术是一种强大的工具,能够在单细胞水平上进行精确测量,广泛应用于免疫学、癌症生物学等领域。为了确保实验结果的准确性和可靠性,制备单细胞悬液时应尽量减少细胞损伤,提高细胞产率,同时保持细胞的原始特性。菲恩生物凭借其先进的单克隆抗体开发平台,提供了多种高亲和力、高特异性的抗体,适用于多种免疫细胞亚群的检测,包括但不限于Th细胞。这些抗体覆盖了人类、大鼠、小鼠等多种物种,提供了丰富的检测指标选择。

以下是推荐的流式抗体配方方案,用于检测不同免疫细胞亚群

流式抗体推荐
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CD3-FITC FITC-30004
CD16-PE PE-30061
CD56-PE PE-30008
CD19-APC APC-30066
Human Th1/Th2 细胞群检测 CD3-PerCP/Cyanine5.5 PCP55-30004
CD4-FITC FITC-30005
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Mouse Th1/Th2 细胞群检测 CD3-PerCP/Cyanine5.5 PCP55-30002
CD4-FITC FITC-30001
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Human Treg细胞群检测 CD4-FITC FITC-30005
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Mouse Treg细胞群检测 CD4-FITC FITC-30001
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